凍存管又稱菌種保存管、磁珠保存管、磁珠凍存管。微生物實驗室常用的菌種保存方法有牛奶法、甘油法、斜面法等。復雜程度各異，效果也差別很大。
 

　　凍存管的使用是一門學問，并不是打開液氮罐、放入凍存管、關上液氮罐這樣簡單的三部曲可以完成的?？茖W正確地使用凍存管，可以避免樣本的損失，并保護試驗人員的安全。
 

　　下面讓我們一起來了解一下凍存管的冷凍步驟吧
 

　　用預熱的PBS溶液洗滌細胞，吸取溶液，含有胰蛋白酶和EDTA的溶液覆蓋細胞(薄薄的液層足夠，胰蛋白酶和EDTA的濃度需要根據細胞系確定)。
 

　　37℃孵育細胞3-5分鐘。
 

　　細胞從底部脫離之后，終止孵育，加入含有血清的培養基，用移液器輕輕地懸浮細胞。
 

　　離心細胞懸液(500xg,5分鐘)，用含有血清的培養基重新懸浮。
 

　　細胞計數。
 

　　離心細胞懸液(500xg,5分鐘)，去除上清液，用適量體積的含有血清的培養基重新懸浮細胞。
 

　　以1:1體積比混合細胞和凍存液(60%培養基，20%胎牛血清，20%DMSO)，然后轉移到Cryo.sTM凍存管中。凍存的細胞密度為1-5×106個/毫升。
 

　　含有細胞的Cryo.sTM凍存管建議以−1K/min的速率降溫，可以將凍存管置于−70℃含有異丙醇的容器中。如果Cryo.sTM凍存管存儲其他樣品，可以直接放置在−20℃，−70℃或者液氮的氣相。
 

　　為了確保樣品冷凍均勻，4mL和5mL的Cryo.sTM凍存管需要先置于在−20℃冰箱過夜，然后再轉移到−70℃或者液氮的氣相。
 

　　然后轉移Cryo.sTM凍存管到液氮罐。為了避免污染(如支原體)和安全考慮，請將Cryo.sTM凍存管置于液氮的氣相，切勿置于液相。