微血管內皮細胞（MicrovascularEndothelialCells,MVECs）是構成微血管（如毛細血管、小靜脈）內壁的關鍵細胞，其培養基及培養方法需嚴格模擬體內微環境，以維持其特異性功能和形態。以下是微血管內皮細胞培養基的配方、培養方法及關鍵注意事項的詳細說明：
一、培養基核心成分
微血管內皮細胞培養基需包含以下關鍵成分，以支持細胞增殖、維持屏障功能及抑制平滑肌細胞污染：
基礎培養基
推薦選擇：
EndothelialCellBasalMedium-2(EBM-2)：專為內皮細胞設計，含低水平生長因子，避免過度刺激。
M199或DMEM/F12：需額外補充生長因子和營養成分。
pH與滲透壓：維持pH7.2-7.4，滲透壓280-320mOsm/kg。
生長因子與補充劑
內皮細胞生長補充劑（ECGS）：含酸性成纖維細胞生長因子（aFGF）、肝素等，促進內皮細胞增殖。
血管內皮生長因子（VEGF）：濃度5-10ng/mL，維持血管生成潛能。
胰島素樣生長因子-1（IGF-1）：濃度10-20ng/mL，促進細胞貼壁與存活。
氫化可的松：濃度1μg/mL，抑制平滑肌細胞污染。
L-谷氨酰胺：濃度2mM，提供能量代謝底物。
血清與抗生素
胎牛血清（FBS）：濃度5%-10%，提供生長因子和貼壁因子。需篩選低內毒素批次（<0.1EU/mL）。
青霉素-鏈霉素：濃度100U/mL青霉素+100μg/mL鏈霉素，預防細菌污染。
兩性霉素B：濃度0.25μg/mL，抑制真菌污染（可選）。
特殊添加劑（按需選擇）
Rho激酶抑制劑（Y-27632）：濃度10μM，促進細胞貼壁（適用于原代培養或傳代初期）。
肝素：濃度100μg/mL，增強VEGF活性并抑制凝血酶誘導的細胞收縮。
抗壞血酸：濃度50μg/mL，促進膠原蛋白合成，維持細胞外基質穩定性。
二、培養方法詳解
1.細胞獲取與原代培養
組織來源：
動物模型：大鼠腦、視網膜、肺或脂肪組織；小鼠腦或耳部皮膚。
人類來源：臍帶靜脈（需消化去除大血管內皮細胞）、脂肪組織或皮膚活檢樣本。
分離方法：
酶消化法：
剪碎組織至1mm³碎片，用0.1%膠原酶A或II型膠原酶37℃消化30-60分鐘。
加入等體積含10%FBS的DMEM終止消化，1000rpm離心5分鐘棄上清。
用培養基重懸細胞，通過200目濾網過濾去除未消化組織。
磁珠分選法：利用CD31或VE-cadherin抗體標記內皮細胞，通過磁珠分離純化。
2.細胞接種與傳代
接種密度：
原代細胞：5×10?cells/cm²（避免密度過低導致細胞老化）。
傳代細胞：3×10?cells/cm²（維持對數生長期）。
傳代操作：
棄舊培養基，用PBS清洗2次。
加入0.05%胰蛋白酶-EDTA，37℃消化2-5分鐘（顯微鏡下觀察細胞變圓）。
加入等體積含血清培養基終止消化，輕柔吹打成單細胞懸液。
1000rpm離心5分鐘，用新鮮培養基重懸后接種。
3.培養條件優化
溫度與CO?：37℃、5%CO?恒溫培養箱。
濕度控制：培養瓶內加入3-5mL無菌PBS防止蒸發。
換液頻率：
原代培養：每48小時半量換液（避免頻繁擾動影響貼壁）。
傳代細胞：每24-48小時全量換液（根據培養基顏色變化調整）。
細胞形態監測：
正常內皮細胞呈鵝卵石樣排列，形成單層緊密連接。
若出現紡錘形細胞（平滑肌細胞污染）或細胞脫落，需調整血清濃度或添加氫化可的松。
三、關鍵注意事項
污染防控：
嚴格無菌操作，使用預封口培養瓶或蓋玻片。
定期檢測支原體污染（PCR法或熒光染色法）。
細胞鑒定：
免疫熒光檢測內皮細胞標志物（如CD31、VE-cadherin、vWF）。
透射電鏡觀察Weibel-Palade小體（內皮細胞特有細胞器）。
功能驗證：
跨內皮電阻（TEER）檢測屏障功能（正常值>150Ω·cm²）。
乙酰化低密度脂蛋白（Ac-LDL）攝取實驗驗證內吞功能。
儲存與復蘇：
液氮凍存：含10%DMSO的凍存液，-80℃過夜后轉入液氮。
快速復蘇：37℃水浴1分鐘內融化，逐步稀釋DMSO至0.1%。
四、應用場景拓展
疾病模型構建：通過高糖培養基模擬糖尿病微血管病變，或缺氧培養模擬缺血性損傷。
藥物篩選：檢測化合物對內皮細胞增殖、遷移或血管生成的影響（如抗血管生成藥物篩選）。
組織工程：與膠原蛋白支架共培養，構建血管化組織模型。
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